Бактериологический посев крови

Бактериологический посев крови

Что такое бактериологический посев, каким образом и с какой целью он проводится?

Зачем и как проводится бактериологический посев?

Основной целью бактериологического исследования крови является определение наличия бактерий в крови. Поскольку под микроскопом невозможно подтвердить или исключить бактериемию, из-за недостаточного количества бактерий, предварительно проводится выращивание (размножение) бактерий в специальной питательной среде, содержащей все необходимые элементы для быстрого роста бактерий.

Когда обнаруживается видимый рост бактерий, культуру, обогащенную бактериями, окрашивают и исследуют под микроскопом. Так проводится предварительная идентификация вида микроорганизмов, находящихся в крови. Для более точной идентификации требуется посев жидкой культуры на плотную среду (в чашке Петри). При таком исследовании можно увидеть, как растут колонии бактерий. С образцами колоний проводятся химические тесты, которые позволяют точно и окончательно выявить вид микроорганизма.

После выявления вида бактерий, присутствующих в крови, определяется их чувствительность к антибиотикам. Это необходимо для того, чтобы выяснить, с помощью какого лекарства можно бороться с выявленным видом бактерий наиболее эффективно.

Показания для проведения бактериологического посева крови

Врач-микробиолог Наталья Петрова: «Показанием проведению бактериологического анализа может быть подозрение на заражение крови; длительное время повышенная температура тела, по причине, которую не удается выяснить; подозрение на инфекционные заболевания (например, эпидемический менингит, стафилококковые и стрептококковые инфекции, кишечные инфекции). Поскольку однократное исследование крови может быть малорезультативным, поэтому могут быть проведены серии из 2 и более исследований за определенный промежуток времени. Утверждать, что возбудителем является какой-то конкретный микроорганизм, позволяет быстрое (48 часов) обнаружение микроорганизма, при неоднократном выделении его из крови или других видов исследуемого материала (мочи, мокроты и т.п.), кроме того, обнаружение этого микроорганизма одновременно на разных видах питательных средах».

Когда берут пробы для бактериального анализа крови?

Кровь для бактериологического посева необходимо сдавать до начала лечения антибиотиками, поскольку употребление антибиотиков может отсрочить или предотвратить рост бактерий, что приведет к ложноотрицательному результату. У пациентов с периодическим повышением температуры тела, кровь нужно брать в период, когда температура растет или сразу же после прохождения пика температуры. Именно в это время в крови находится максимальное количество бактерий. Во многих лабораториях специалисты рекомендуют сдать второй образец крови не позднее, чем через один час после первого, для того, чтобы увеличить шансы обнаружения бактерий.

Необходимый объем крови

У больного с бактериемией в 1 мл крови может присутствовать всего одна микробная клетка, поэтому если в бутылку с питательной средой внести недостаточное количество крови, можно получить ложноотрицательный результат.

Парадоксально, однако получить ложноотрицательный результат можно и тогда, когда в питательную среду вносится слишком много крови. Так происходит потому, что кровь в большом количестве продолжает оказывать бактерицидное. Конечно же, существует компромисс между слишком малым объемом крови и избыточным объемом крови. Оптимальное разведение крови в питательной среде должно соответствовать соотношению 1:10, требуемый объем (обычно 5-10 мл), все зависит от того, какая именно питательная среда используется для анализа.

Техника выполнения бактериологического посева

При бактериологическом посеве нужно придерживаться асептической техники, чтобы исключить возможность бактериального загрязнения крови. Если образец взят согласно правилам, в бутылку с питательной средой попадут только те микроорганизмы, которые находится в крови больного.

Правила взятия крови для бактериологического посева:

  • Кровь следует брать из периферической вены, без использования катетера, чтобы исключить загрязнение.
  • Процедура выполняется в стерильных перчатках. Место венепункции смазывается антисептиком.
  • Также антисептиком дезинфицируется и крышка бутылки с питательной средой.
  • Кровь берется стерильным шприцем.
  • В бутылку кровь вносится через резиновую пробку. Снимать пробку с бутылки нельзя.
  • Культура крови снабжается этикеткой с данными о пациенте.

Результаты бактериологического посева крови делятся на следующие три группы:

  • Роста бактерий нет.
  • Чистый рост бактерий.
  • Смешанный рост бактерий.

Отсутствие роста бактерий: Нормальный результат, означающий, что кровь пациента стерильна.

Чистый рост бактерий: результат, означающий, что имеется рост одного вида бактерий, который был выделен из культуры. Получения такого результата следует ожидать, когда у пациента сепсис.

Смешанный рост: результат указывает на то, что из культуры было выделено более одного вида бактерий. Такое инфицирование крови случается редко. Чаще всего, смешанный рост бактерий является подтверждением того, что питательная среда была загрязнена.

Забор, хранение и транспортировка крови для бактериологического исследования:

Забор крови проводят из локтевой вены.

Обработка места венепункции:

– поверхность протирают тампоном, смоченным в 5% йодном растворе, круговыми движениями от центра к периферии;

– обработанный участок высушивают и затем кожу тщательно очищают 70% этанолом.

Обработанный участок вновь высушивают и затем:

1. Прокалывают вену стерильной иглой со шприцем на участке забора и забирают 10 мл крови на гемокультуру. Над пламенем спиртовки открывают флакон со средой и вносят из шприца кровь осторожно (чтобы не замочить пробку), перемешивают содержимое флакона.

2. Для серологической диагностики кровь берут в объеме 2-5 мл в стерильную пробирку.

– забранную кровь вносят в емкости с аэробными или анаэробными условиями;

– если у больного отмечается лихорадка неясного генеза, то кровь берут поэтапно:

– первый этап – берут 2 пробы из разных кровеносных сосудов;

-второй этап – через 24 или 36 часов берут еще две пробы на пике температуры;

– взятие крови из постоянного внутривенного или внутриартериального катетера допускается только в случаях подозрения на катетер-ассоциированную инфекцию. Если больной уже лечится антибиотиками, то у него в течение 48 часов забирают 6 проб.

Читать еще:  Крем с фитоэстрогенами для интимной зоны

Хранение не более 2 часов при комнатной температуре.

Транспортировка. Используются стерильные транспортировочные емкости со средой, содержащей нейтрализаторы антибиотиков.

Забор, хранение и транспортировка крови для вирусологического исследования:

забор крови проводят так же как для бактериологического исследования;

-при исследовании плазмы на вирусы используют пробирки с антикоагулянтом – этилендиаминтетраацетатом (ЭДТА) или гепарином. Отделенную плазму (после центрифугирования) берут в асептических условиях и исследуют.

Хранение не более 2 часов при комнатной температуре.

При постановке ПЦР для выявления НК вирусов плазму следует охладить или заморозить при – 70 0 С для более длительного хранения.

Транспортировка. Используют стерильные транспортировочные емкости со средой, содержащей реагенты, разрушающие форменные элементы крови. Материал транспортируют в одноразовых сухих пробирках с вмонтированным зонд-тампоном (тубсер).

Забор, хранение и транспортировка крови для микологического исследования:

забор проводят так же как для бактериологического исследования;

хранить до начала исследования не более 2 часов при комнатной температуре;

транспортировать так же как и при бактериологическом исследовании.

Забор, хранение и транспортировка крови для паразитологического исследования:

забор, хранение и транспортировку проводят так же как и при бактериологическом исследовании;

– для диагностики паразитарных инвазий используют нативную кровь или кровь с добавлением антикоагулянтов.

Бактериологическое исследование крови

Посев крови проводят в 50-100 мл. сахарного бульона, а также параллельно в тиогликолевую среду, при подозрении на брюшной тиф – в желчный бульон или среду Раппопорт. Обязательно выдерживают соотношение крови и среды 1:10 .

Посевы помещают в термостат и инкубируют в течение 10 дней. Просмотр посевов проводят ежедневно. О наличии микробов свидетельствует: помутнение среды; осадок эритроцитов и хлопьевидный осадок на их поверхности ,пленка на поверхности; гемолиз эритроцитов;

При наличии роста делают высевы на чашки с 5% кровяным агаром. Изучают колонии, делают посев на скошенный агар для накопления и идентификации культуры, определяют чувствительность к антибиотикам.

– анализ можно считать отрицательным, если по прошествии 10 дней после посева крови, роста микроорганизмов на питательных средах не обнаружено;

– выделение патогенных видов свидетельствует об их этиологической роли в заболевании;

– при выделении условно-патогенных микроорганизмов следует учитывать идентичность гемокультуры с культурами, выделенными из другого материала от этого больного.

Для определения истинной этиологической ролимикроорганизмов необходимо учитывать следующие факторы:

– обнаружение одного и того же микроорганизма в посевах двух и более проб крови;

– быстрый рост микроорганизмов (24ч.- 48 ч);

– проявление одинаковых биологических свойств и чувствительности к антибиотикам у разных изолятов, полученных из пробы крови;

Катетер – ассоциированные инфекции крови (КАИК)

В настоящее время отмечается рост числа катетер – ассоциированных инфекций, которые занимают третье место среди всех нозокомиальных инфекций и первое место среди причин бактериемии.

КАИК – первичная бактериемия у пациентов с сосудистым катетером и системными клиническими проявлениями инфекции, отсутствием других явных источников инфекции и выделением с поверхности катетера количественным (10 3 КОЕ/ мл с сегмента катетера) или полуколичественным методом ( 15 КОЕ/ мл с кончика катетера или подкожного сегмента) того же микроорганизма, что из крови. Или при получении пятикратной разницы количества микробных клеток в гемокультурах, взятых одновременно из центрального венозного кровотока (ЦВК) и периферической крови. Чаще всего при КАИК выделяются коагулазо–негативные стафилококки и S. aureus. Значительно реже выделяются Enterococcus spp ,Candida spp , Pseudomonas spp. еще реже представители семейства энтеробактерий.

У пациентов с непродолжительно стоящим катетером его колонизация чаще всего происходит S. aureus, Bacillus spp, Corynebacterium spp. Поверхность катетера может колонизироваться также с кожи рук медперсонала P. aeruginosa, Acinetobacter spp, Stenotrophomonas. maltophilia, C. albicans.

Колонизация катетеров возможна также при использовании контаминированных инфузионных растворов. В этом случае наиболее часто выделяются Enterobacter spp , Citrobacter spp , Serratia spp.

Разработана классификация и критерии диагностики КАИК (Seifert H , Jancen B. 2004г.)

1. Колонизированный катетер: в этом случае не наблюдается клинической симптоматики .Отмечается рост бактерий > 15 КОЕ/ мл –или -рост 10 3 КОЕ/ м – при использовании количественного метода оценки колонизации катетера.

2.Инфекция места введения катетера: гиперемия, болезненность. Нагноение кожи в пределах 2см. от места введения катетера. Культуральный метод исследования крови дает отрицательный результат. При этих формах катетер колонизирован, а бактериемии нет или есть.

3. «Карманная» инфекция: нагноение подкожного кармана в месте имплатированного катетера. Культуральный метод исследования крови дает отрицательный результат.

4. Туннельная инфекция: гиперемия, уплотнение и нагноение в пределах более 2см. от места введения катетера и по направлению вдоль туннелированного катетера. Культуральное исследование крови дает отрицательный результат.

5. Инфекция, связанная с инфузатом: выделение одного и того же микроорганизма из переливаемого раствора и крови из периферической вены при наличии системных признаков инфекции.

Бактериемия, фунгиемия (бактериологическое исследование крови)

бактериологическое исследование – совокупность методов, применяемых для обнаружения и установления природы бактерий, выделенных от больных, бактерионосителей или из объектов окружающей среды.

ВВЕДЕНИЕ

Кровь – является одним из наиболее распространенных материалов, используемых для бактериологического исследования. В норме кровь ! стерильна, наличие в ней бактерий (бактериемия) или грибов (фунгиемия) является патологией.

Читать еще:  От аллергии супрастинекс

Исследование крови проводится при:
• лихорадке (температура тела 38°С и выше) неясного генеза;
• гипотермии (температура тела 36°С и ниже);
• лейкоцитозе (сдвиг лейкоцитарной формулы влево);
• гранулоцитопении.

Бактериемия:
• является характерной особенностью течения брюшного тифа, бруцеллеза, лептоспироза;
• транзиторная бактериемия возникает при различных инфекциях, травмах или раневых инфекциях и др.; всегда проходит спонтанно при отсутствии иммунодефицита;
• длительная бактериемия характерна для ангиогенных инфекций (инфицированная аневризма, эндокардит, тромбофлебит);
• бактериемия, а также фунгиемия могут развиваться при внутривенном введении лекарственных средств; в этом случае они наиболее часто обусловлены «оппортунистическими микроорганизмами;
• бактериемия (фунгиемия) и сепсис могут быть вызваны практически всеми микроорганизмами: как патогенными, так и «оппортунистическими» бактериями и грибами.

ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ ПРОБ КРОВИ

По возможности кровь следует брать до назначения противомикробных средств. Если же антибактериальная терапия уже проводится, то кровь следует забирать непосредственно перед очередным введением (приемом) лекарственного средства. ! Оптимальное время взятия пробы крови – при ознобе ил на подъеме температурной реакции.

Как правило, забираются две пробы из вен разных рук с интервалом 30 минут. С целью ! повышения вероятности выделения возбудителя в течение одного часа следует произвести забор трех проб крови из разных вен. Получение образца крови из катетера, кроме тех случаев, когда имеется подозрение на наличие катетер-ассоциированной инфекции, или невозможен забор крови из вены – не допускается.

Количество крови для одной пробы составляет:
• у взрослых – 10,0 мл;
• у детей – от 2,0 до 5,0 мл;
• у новорожденных и детей неонатального периода – от 1,0 до 2,0 мл.

Участок кожи над веной, откуда будет взята кровь, предварительно дезинфицируют настойкой йода, 10% поливидон-йоданата, 70% спиртом или 0,5% раствором хлоргексидина в 70% спирте. При этом дезинфектант должен испариться с кожи до взятия пробы. Следует отметить, что даже после тщательной обработки кожных покровов в глубоких слоях кожи могут остаться S. epidermidis, Propionibacterium acnes и др., которые впоследствии могут попасть в образцы крови (псевдобактериемия). Псевдобактериемия может встречаться при контаминации антисептических растворов, шприцев или игл, используемых при взятии анализа крови.

ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ
(для культивирования образцов крови)

В качестве питательной среды для культивирования образцов крови обычно используется жидкая питательная основа, обеспечивающая условия роста всех видов клинически значимых бактерий и грибов. Согласно рекомендации ВОЗ, это ! триптиказо-соевый бульон (ТСБ). Однако отечественные нормативы допускают использование и других питательных сред.

Кровь смешивают с бульоном в соотношении 1 : 10 (10,0 мл крови и 100,0 мл бульона), далее:
• если предполагается выделить из образца крови только аэробные бактерии или грибы, то флаконы следует предварительно разгерметизировать, проткнув простерилизовную мембрану (крышку);
• при исследовании образца крови на бруцеллы и другие медленно растущие микроорганизмы рекомендуется использовать так называемые двухфазные флаконы, заполненные бульоном (жидкая фаза) и скошенным агаром (твердая фаза).

( ! ) Для приготовления бульона и агара следует использовать ТСБ. при этом газовая среда флакона должна быть насыщена двуокисью углерода.

Частота выделения микроорганизмов из крови при использовании флаконов лабораторного приготовления ниже, чем при использовании готовых флаконов промышленного производства, поскольку последние:
• содержат стандартную питательную основу (сывороточные белки, аминокислоты и ростовые добавки);
• имеют постоянную газовую атмосферу и антикоагулянт, нейтрализующий бактерицидное действие сыворотки.

ЭТАПЫ ВЫПОЛНЕНИЯ АНАЛИЗА

Основными этапами анализа являются:
• посев;
• субкультивирование.

Посев полной бактериологичесой петли проросшего бульона производят на шоколадный или кровяной агар, или на среду Сабуро (грибы). Инкубация, как правило, длится 7 – 10 дней. Большие сроки инкубации целесообразны при :
• подозрении на наличие бруцелл или других требовательных к питательным средам микроорганизмам;
• наличии эндокардита;
• проводимой антибиотикотерапии.

Следует отметить, что пневмококки имеют тенденцию к автолизу и быстро погибают. В связи с последним обстоятельством субультивирование для их обнаружения рекомендуется проводить через каждые 48 ч на шоколадном агаре путем инкубации посевов в течение 18 – 24 часов или использовать флаконы с двухфазной средой. Истинные патогенны могут быть отдиффренцированы от контаминантов, если имеет место :
• рост одного и того же микроорганизма в двух флаконах при посеве проб крови от одного пациента, взятых с интервалом во времени;
• обнаружение одного и того же микроорганизма в посевах двух и более проб крови;
• рост микроорганизма в течение 48 ч;
• появление одинаковых свойств и чувствительности к антибиотикам у разных изолятов, полученных из одной пробы крови;
• выделение двух и более микробов, что может свидетельствовать как о полимикробной бактериемии, так и о контаминации пробы.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ КУЛЬТУР К АНТИБИОТИКАМ

Для определения чувствительности к антибиотикам энтеробактерий и стафилококков обычно используют метод Керби-Баура. С целью определения чувствительности к антибиотикам (количественное определение минимальной подавляющей концентарции) стрептококков (в том числе и пневомкокков), не ферментирующих грамотрицательныех палочек, а также гемофильной палочки и дрожжеподобных грибов рекомендуется использовать коммерческие тест-системы («стрипы»).

Бактериологическое исследование крови

2) бактериологическое исследование ликвора

3) бактериологическое исследование носоглоточной слизи

4) бактериоскопическое исследование

46. Современное течение скарлатины характеризуется

1) развитием инфекционно-токсического шока

2) рецидивирующим течением

3) частым отсутствием налётов на миндалинах

4) частым отсутствием шелушения на коже после сыпи

47. Возбудителями некротического миозита являются

Читать еще:  Может ли при зачатии подняться температура

Бета-гемолитические стрептококки группы А

2) не гемолитические стрептококки

3) гемолитические стафилококки

4) патогенные нейссерии

48.Фаготипирование стафилококков применяется

Для внутривидового типирования штаммов золотистого стафилококка

2) для внутривидового тилирования штаммов эпидермального стафилококка

3) для типировании видов стафилококков

4) установлении человеческого или животного происхождения штаммов стафилококка

49. Менингит у детей до 5 лет чаще всего вызывают менингококки серогруппы

В

50. На инфекцию вызванную Streptococcus pyogenes не указывает

Гидролиз эскулина в присутствии солей жёлчных кислот

3) наличие в мазках цепочек грамположительных кокков

4) полисахапридный антиген

51. К коагулазонегативным стафилококкам не относится

Staphylococcus aureus

2) Staphylococcus epidermidis

3) Staphylococcus hominis

4) Staphylococcus saprophуticus

52. При генерализованной форме менингококковой инфекции ликвор не забирают

В бескислородных условиях

2) в стерильных условиях

3) до введения антибиотиков

4) предохраняя от охлаждения

53. Менингококки не культивируют на

1) кровяном агаре

Среде Китта-Тароцци

3) среде с ристомицином

4) сывороточном агаре

54. Инфицирование плода при прохождении по родовым путям вызывает

Streptococcus agalactiae

2) Staphylococcus aureus

3) Streptococcus pneumoniae

4) Streptococcus pyogenes

55. Тестом на патогенность стафилококков не является:

1) гемолиз эритроцитов барана

Каталазная активность

3) коагулазная активность

4) лецитиназная активность

56. Пятнистую сыпь и петехиальные геморрагии при генерализации менингококковой инфекции вызывают

1) капсульные полисахариды

2) белковые экзотоксины

Липополисахаридный эндотоксин

4) протеины наружной мембраны

57. Менингококковая вакцина относится к типу

2) живых аттенуированных

3) инактивированных корпускулярных

Химических

58. Фактором патогенности стафилококков не является

4) эндотоксин

59. Наиболее распространённой формой менингококковой инфекции является

Назофарингит

60.К методам серологической идентификации менингококков не относится

1) реакция латексной агглютинации

2) встречный иммуноэлектрофорез

3) реакция непрямой гемагглютинации

Реакция преципитации

Укажите неправильное утверждение

1) менингококк не устойчив в окружающей среде

2) источником менингококковой инфекции являются больные и носители

3) заражение менингококковой инфекцией происходит воздушно-капельным путем

Заражение менингококковой инфекцией возможно контактно-бытовым путем

62.Основной путь распространения менингококка в организме человека

Гематогенный

63.Основной источник инфекции при менингококковой инфекции

1) больные генерализованными формами болезни

2) больные менингококковым назофарингитом

Носители менингококка

4) реконвалесценты менингококкового менингита

64.Для определения серотипа пневмококка используют

2)феномен “набухания капсулы”

3)реакцию преципитации в геле

65.Материал для бактериологического обследования гомосексуалистов на гонорею отбирают

Из прямой кишки

4) Из периферической крови

66. Гонококковая вакцина применяется для

1) специфической профилактики

2) специфического лечения

Специфической диагностики

Теоретические вопросы для самоподготовки по теме

«Энтеробактерии. Патогенные эшерихии»

1. Общая характеристика семейства энтеробактерий.

2. Таксономия эшерихий. Морфологические и культуральные свойства.

3. Антигенная структура и серологические типы эшерихий. Классификация энтеропатогенных кишечных палочек (ЭПКП, ЭИКП, ЭТКП, ЭГКП, ЭАКП).

4. Биохимические свойства, токсины эшерихий.

5. Резистентность, источники инфекции, пути передачи.

6. Заболевания людей, вызываемые патогенными эшерихиями.

7. Особенности патогенеза эшерихиозов, вызванных разными группами кишечных палочек.

8. Лабораторная диагностика заболеваний, вызываемых эшерихиями.

9. Специфическая профилактика и этиотропное лечение больных.

ЛИТЕРАТУРА. Основная:

1. Медицинская микробиология. Под ред. В.И.Покровского- ГЭОТАР-МЕД, 2004.- 768 с.

2. Медицинская микробиология. Под ред. А.А.Воробьева – МИА- 2004 г.

3.Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. Учебник. СПб, 1998, “Специальная литература”.

4. Борисов Л.Б. с соавт. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. 2004, “Медицина”.

5. Борисов Л.Б. Руководство к практическим занятиям по микробиологии. М., 1986, “Медицина”.

6. Лекционный материал.

2. Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии, иммунологии. Под ред. А.А.Воробьева, А.С.Быкова. М., МИА, 2003.

Лабораторное занятие 21

ТЕМА: Энтеробактерии. Возбудители брюшного тифа, паратифов, сальмонеллезных гастроэнтеритов.

ЦЕЛЬ: сформировать у студентов представление о биологических свойствах сальмонелл, методах микробиологической диагностики, средствах специфической профилактики и этиотропной терапии

СТУДЕНТ ДОЛЖЕН ЗНАТЬ: биологические особенности сальмонелл, правила сбора материала от больного, патогенез и возрастные особенности формирования инфекционного процесса, принципы лабораторной диагностики, терапии и основы профилактики сальмонеллезов.

СТУДЕНТ ДОЛЖЕН УМЕТЬ: выбрать материал для исследования, оформить направление в лабораторию, правильно транспортировать материал, клинически интерпретировать результаты микробиологического исследования.

1.Прочтите рекомендуемую литературу. Заполните схемы-алгоритмы (письменно).

2. Решите ситуационные задачи по сборнику № 25-30

Теоретические вопросы для самоподготовки.

1. Общая характеристика рода сальмонелл.

2. Морфология, физиология сальмонелл. Антигенная структура. Серологическая классификация по Кауфману -Уайту.

3. Патогенность сальмонелл.

4. Сальмонеллы – возбудители брюшного тифа и паратифов, их характеристика. Экология и распространение возбудителей тифо – паратифозных инфекций. Патогенез брюшного тифа. Иммунитет. Динамика антителообразования при брюшном тифе. Лабораторная диагностика тифо-паратифозных инфекций. Специфическая профилактика и этиотропное лечение тифо -паратифозных инфекций.

5. Сальмонеллы – возбудители гастроэнтеритов (сальмонеллезов).

Патогенез сальмонеллеза. Особенности лабораторной диагностики сальмонеллеза. Профилактика и лечение сальмонеллеза.

6. Сальмонеллы как возбудители госпитальных инфекций. Специфическая профилактика и этиотропное лечение

ЛИТЕРАТУРА. Основная:

1. Медицинская микробиология. Под ред. В.И.Покровского- ГЭОТАР-МЕД, 2004.- 768 с.

2. Медицинская микробиология. Под ред. А.А.Воробьева – МИА- 2004 г.

3.Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. Учебник. СПб, 1998, “Специальная литература”.

4. Борисов Л.Б. с соавт. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. 2004, “Медицина”.

5. Борисов Л.Б. Руководство к практическим занятиям по микробиологии. М., 1986, “Медицина”.

6. Лекционный материал.

1.Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии, иммунологии. Под ред. А.А.Воробьева, А.С.Быкова. М., МИА, 2003.

Лабораторное занятие 22

Последнее изменение этой страницы: 2016-08-26; Нарушение авторского права страницы

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector